Manufactura industrial
Internet industrial de las cosas | Materiales industriales | Mantenimiento y reparación de equipos | Programación industrial |
home  MfgRobots >> Manufactura industrial >  >> Industrial materials >> Nanomateriales

Ferumoxitol atenúa la función de las MDSC para mejorar la inmunosupresión inducida por LPS en la sepsis

Resumen

La inmunosupresión inducida por sepsis se reconoce como una de las principales características responsables de los fracasos terapéuticos. Se ha informado que las células supresoras derivadas de mieloides (MDSC), que se caracterizan principalmente por sus propiedades supresoras, se expanden en la sepsis. Se ha demostrado que el ferumoxitol (FMT), un suplemento de hierro aprobado por la FDA, posee propiedades inmunomoduladoras en los tumores. Sin embargo, no está claro si FMT altera las funciones de las MDSC para reducir la inmunosupresión de la sepsis tardía. Aquí, mostramos un efecto inmunomodulador de FMT en MDSC para mejorar la inmunosupresión inducida por lipopolisacáridos (LPS) en la etapa tardía de la sepsis. La separación de células con FMT internalizado y la detección del contenido de hierro intracelular mostró que las MDSC podrían captar FMT. Las dosis bajas de FMT no tuvieron efectos sobre la viabilidad celular de las MDSC, pero FMT inhibió la expansión de las MDSC in vitro. Además, FMT redujo significativamente los niveles de expresión de Arg-1, S100A8, S100A9 y p47phox, así como la producción de ROS en MDSC. FMT disminuyó el porcentaje de MDSC granulocíticas (G-MDSC) y promovió la diferenciación de MDSC en macrófagos. Además, FMT redujo el reclutamiento de glóbulos blancos y el engrosamiento de la pared alveolar en los pulmones y las áreas de necrosis en el hígado, así como algunos marcadores bioquímicos de disfunción hepática. FMT disminuyó el porcentaje de G-MDSC y MDSC monocíticas (M-MDSC) en los bazos de ratones sépticos inducidos por LPS. Es de destacar que FMT redujo las funciones inmunosupresoras de células T tanto de G-MDSC como de M-MDSC. Como era de esperar, FMT también redujo significativamente la expresión de los genes Arg-1 y p47phox en CD11b esplénico + Gr-1 + células aisladas de ratones expuestos a LPS. Estos datos indican que FMT disminuyó las funciones inmunosupresoras de las MDSC al disminuir la producción de Arg-1 y ROS, lo que sugiere que FMT puede reducir la inmunosupresión a largo plazo en la etapa tardía de la sepsis.

Introducción

El FMT, un suplemento de hierro aprobado por la Administración de Alimentos y Medicamentos, se ha utilizado para tratar la anemia por deficiencia de hierro en adultos con enfermedad renal crónica (ERC) [1], y el FMT también se usa ampliamente como agente de contraste y portador de fármacos [2] . Estudios anteriores demostraron que FMT tenía propiedades inmunomoduladoras, como su capacidad para inducir un cambio fenotípico en los macrófagos M2 hacia un CD86 + alto , Subtipo de macrófago M1 positivo para TNF-α [3, 4]. Sin embargo, no se han examinado los efectos del FMT en otras células inmunitarias.

Las MDSC son una población heterogénea de células mieloides inmaduras con una potente capacidad inmunosupresora [5]. En ratones, las MDSC se pueden identificar como Gr-1 + CD11b + células, mientras que las MDSC humanas carecen del homólogo Gr-1 y se definen como CD14 - HLA-DR - CD11b + CD33 + o CD14 + HLA-DR - CD11b + CD33 + células [6]. Las MDSC consisten en dos grandes grupos de células, granulocíticas o PMN-MDSC y M-MDSC, y ambas poblaciones tienen funciones inmunosupresoras a través de la producción de iNOS, ROS y Arg-1. El aumento de la actividad de Arg-1 agota la l-arginina y la escasez de l-arginina inhibe la proliferación de células T al disminuir la expresión de la cadena zeta de CD3. INOS genera NO, que inhibe las funciones de JAK3 y STAT6 en las células T, así como la expresión de MHC II. ROS induce la modificación postraduccional de los receptores de las células T y puede provocar la falta de respuesta de las células T específicas de antígeno [7]. Las M-MDSC surgen de precursores de monocitos y pueden diferenciarse en macrófagos y DC en condiciones apropiadas de citocinas. La mayor parte de nuestro conocimiento sobre las MDSC proviene de estudios sobre el cáncer. En los últimos años, también se ha descrito una expansión de las MDSC en enfermedades inflamatorias agudas y crónicas que incluyen inflamación, quemaduras y enfermedades autoinmunes [8, 9]. Recientemente, se informó en estudios de imágenes de un alto nivel de captación de nanopartículas fluorescentes por MDSC en el esófago y el bazo de ratones [10]. Sin embargo, no está claro si FMT altera la función de las MDSC involucradas en el desarrollo de enfermedades inflamatorias.

La sepsis, una respuesta inflamatoria del huésped desregulada a una infección grave que puede causar una disfunción orgánica potencialmente mortal, es la causa más común de muerte en la unidad de cuidados intensivos. La sepsis inicia una respuesta proinflamatoria abrumadora que, si no se trata a tiempo, se transforma rápidamente en inmunosupresión a largo plazo. La expansión de las MDSC se ha descrito en el bazo y los ganglios linfáticos en modelos animales sépticos [8, 11], así como en pacientes con sepsis [12,13,14]. La activación de células inmunosupresoras como las MDSC es fundamental para el control apropiado de la hiperreactividad del sistema inmunitario innato, pero su expansión excesiva puede conducir a hiperinmunosupresión, que es la fuerza impulsora predominante de la infección secundaria y la mortalidad en la sepsis tardía. Un mayor número de MDSC se correlaciona con la supresión de la proliferación de linfocitos. Se ha informado que las MDSC adquieren su fenotipo en la médula ósea y luego migran a órganos linfoides secundarios para inhibir las respuestas de las células T y suprimir su proliferación en ratones inmunosuprimidos con LPS [8]. La mayoría de los pacientes con septicemia prolongada presentan un estado inmunosupresor y la mayor parte de la mortalidad por septicemia se debe a la inmunosupresión por septicemia tardía. La eliminación de las MDSC puede tener efectos beneficiosos en la sepsis tardía al restaurar la respuesta inmunitaria [15]. Por lo tanto, planteamos la hipótesis de que FMT puede modular las funciones de las MDSC para reducir la inmunosupresión de la sepsis tardía.

Aquí mostramos un efecto inmunomodulador de FMT en MDSC. Utilizamos las propiedades magnéticas de FMT para revelar que las MDSC podían fagocitar FMT in vitro. Además, encontramos que FMT atenuó la función inmunosupresora de las MDSC mediante la regulación a la baja de Arg-1 y ROS. Además, los experimentos in vivo confirmaron que FMT mejoró la etapa tardía de la sepsis inducida por LPS en ratones al debilitar la capacidad de las MDSC para inhibir las células T. Nuestros datos sugieren que la función inmunomoduladora de FMT puede usarse para tratar la inmunosupresión que ocurre en la sepsis tardía.

Materiales y métodos

Ratones

Se adquirieron ratones macho C57BL / 6 (de 8 a 10 semanas de edad) en el Centro de Investigación de Animales Modelo de la Universidad de Nanjing (Nanjing, China). Los ratones se criaron en condiciones libres de patógenos específicos (SPF) en un ciclo de luz / oscuridad de 24 horas y se les permitió acceso libre a alimentos y agua. Todos los experimentos con ratones fueron aprobados por el Comité Institucional de Uso y Cuidado de Animales de la Universidad de Nanjing.

Tinción con azul de Prusia

La distribución intracelular de FMT se detectó utilizando el kit de tinción con azul de Prusia de Perl (Solarbio, China) de acuerdo con las instrucciones del fabricante. Brevemente, las células se fijaron en paraformaldehído al 4% durante 15 min, y luego se incubaron con ferrocianuro de potasio al 10% durante 25-30 min, seguido de lavado y contratinción con rojo nuclear rápido durante 10 min. Las células que contienen partículas azules en el citoplasma fueron positivas para la tinción con azul de Prusia.

Generación de MDSC derivadas de la médula ósea

Las células de la médula ósea se obtuvieron lavando los fémures y las tibias de ratones de tipo salvaje seguido de lisis de glóbulos rojos. Las células de la médula ósea se cultivaron en medio RPMI-1640 completo con FBS al 10%, penicilina y estreptomicina al 1% v / v (Gibco, CA), factor estimulante de colonias de granulocitos y macrófagos 40 ng / ml (GM-CSF) (Miltenyi Biotech, Alemania) y 40 ng / mL de IL-6 (Miltenyi Biotech, Alemania) a 37 ° C en un 5% de CO 2 incubadora durante 4 días. Se recolectaron células no adherentes para experimentos adicionales.

Ensayo de viabilidad celular

La viabilidad celular se analizó usando el Cell Counting Kit-8 (Dojino, Kumamoto, Japón) de acuerdo con las instrucciones del fabricante. Brevemente, MDSC (5 × 10 3 ) se sembraron en placas de cultivo de 96 pocillos y se incubaron en un 5% de CO 2 atmósfera a 37 ° C antes del tratamiento. Luego, el medio se reemplazó con medio fresco que contenía varias concentraciones de FMT (250, 500, 1000, 2000 μg / mL) durante 24 h. Posteriormente se descartó el sobrenadante y se añadió medio fresco que contenía una solución de CCK-8. Después de incubar a 37 ° C durante 3 h, se midió la absorbancia a 450 nm utilizando un lector de microplacas Gen5 (BioTek, EE. UU.).

Aislamiento de ARN total y PCR en tiempo real

El ARN total se extrajo de las células usando el reactivo TRIzol (Invitrogen, EE. UU.) Y se cuantificó con un espectrofotómetro Nanodrop (Thermo Scientific, EE. UU.) Antes de realizar la transcripción inversa utilizando el kit de síntesis de ADNc de primera hebra HiScript II (Vazyme Biotech Co., Ltd, China) según las instrucciones del fabricante. La reacción en cadena de la polimerasa cuantitativa (PCR) en tiempo real se realizó utilizando el kit SYBR Green PCR (Bio-Rad, Hercules, CA) en un sistema de qPCR en tiempo real StepOne-Plus de Applied Biosystems (Applied Biosystems, Forster City, CA). La expresión génica se normalizó a GAPDH utilizando 2 −ΔΔCt método. Las secuencias del cebador se enumeran en el archivo adicional 1:Tabla S1.

Citometría de flujo

Los tejidos se prepararon como suspensiones unicelulares con colagenasa tipo D (1 mg / ml) y DNasa I (0,1 mg / ml) en solución salina equilibrada de Hanks (HBSS) a 37 ° C durante 30 min, y luego los glóbulos rojos de el bazo se lisó. Las suspensiones de células se filtraron a través de filtros de células de 70 µm y los linfocitos se recogieron por centrifugación a 300 g durante 5 min a 4 ° C. Después del lavado, las células se prepararon inmediatamente para la clasificación de células activadas por fluorescencia. Se incubaron células individuales con reactivo de bloqueo FcR (Miltenyi Biotech, Alemania) durante 10 min, seguido de tinción con los siguientes conjugados de anticuerpos durante 20 min:anti-CD11b, anti-CD11c, anti-CD4 y anti-CD8 marcados con FITC; Anti-Ly6G marcado con PE; Anti-Ly6C, anti-CD3, anti-F4 / 80 y anti-MHC II marcados con APC (BioLegend, CA). Después del lavado, las células se detectaron con un FACS Calibur (BD, CA) y los datos se analizaron con FlowJo 7.6 (Tree Star, Inc., EE. UU.)

Tinción H&E

Se fijaron tejidos de hígado y pulmón en formaldehído tamponado con fosfato al 4%. El tejido fijado se incrustó en parafina y las secciones de 5 μm de espesor se tiñeron con hematoxilina y eosina para microscopía óptica.

Ensayo inmunoabsorbente ligado a enzimas

Los niveles séricos de TNFα, MCP-1 e IL-1β se determinaron utilizando kits de ELISA específicos (Dakewe, China) de acuerdo con las instrucciones del fabricante. Cada muestra se analizó por duplicado.

Detección de ROS

Las ROS intracelulares se midieron utilizando el kit de diacetato de 2,7-diclorodihidrofluoresceína (DCFH-DA) (Beyotime, China) de acuerdo con las instrucciones del fabricante. Brevemente, las células se lavaron dos veces con PBS y se incubaron con DCFH-DA 5 μM a 37 ° C en la oscuridad durante 30 min, luego se lavaron con medio RPMI-1640 y se resuspendieron en PBS. Las células se analizaron para determinar la fluorescencia verde intracelular utilizando un citómetro de flujo (BD, CA).

Ensayo de proliferación de células T

Total de CD3 + Las células T se enriquecieron de los bazos de ratones de tipo salvaje usando un kit CD3ε MicroBead (Miltenyi Biotech, Alemania) y tinción CFSE incubada (Invitrogen, EE.UU.). Para la proliferación de células T inducida por anticuerpos anti-CD3 / CD28, las células T se activaron con anticuerpo anti-CD3 (1 μg / mL) y anticuerpo anti-CD28 (1 μg / mL). G-MDSC (Gr-1 alto Ly-6G + ) y M-MDSC (Gr-1 dim Ly-6G - ) aislado de bazos de ratones tratados con FMT o tratados con vehículo usando un kit de aislamiento de células supresoras derivadas de mieloides (Miltenyi Biotech, Alemania) de acuerdo con las instrucciones del fabricante. Las MDSC se cultivaron conjuntamente en una proporción de 1:1 con CD3 + marcado con CFSE Células T en placas de fondo plano de 96 pocillos durante 3 días. CFSE se divide igualmente entre las células hijas con cada división; por tanto, la proliferación se determinó mediante citometría de flujo. La pureza de las células después de la clasificación fue> 90%.

Estadísticas y análisis de datos

Todas las estadísticas se calcularon utilizando el software GraphPad Prism 6 (GraphPad Software, CA) y se presentan como las medias ± desviaciones estándar (SD). Las diferencias entre dos grupos fueron analizadas por la U de Mann-Whitney t de Student no emparejado, de dos colas prueba. Se utilizó ANOVA de una vía para la comparación de múltiples grupos. Todos los experimentos fueron repetidos al menos tres veces. Diferencias con p los valores <0,05 se consideraron estadísticamente significativos.

Resultados

Una gran cantidad de MDSC adoptan FMT

Para verificar si las células con FMT internalizadas están separadas por MACS MicroBeads, usamos tinción con azul de Prusia para detectar el contenido de hierro intracelular en macrófagos tratados con FMT (1000 ng / mL) durante 24 h. Las células se dividieron en tres grupos:antes de la separación magnética, las células positivas para FMT que se seleccionaron magnéticamente (FMT +) y las que no estaban aisladas magnéticamente (FMT-). La tinción con azul de Prusia demostró que la mayoría de las células seleccionadas magnéticamente eran positivas para el azul de Prusia (Fig. 1a). Para comparar la capacidad de fagocitar FMT entre MDSC, macrófagos y países en desarrollo, aislamos esplenocitos de ratones C57BL / 6 sin tratamiento previo tratados con FMT durante 6 h, 12 h, 24 hy 48 h. Los esplenocitos se dividieron en dos subconjuntos:antes de la separación magnética y células positivas para FMT. El análisis de citometría de flujo reveló que casi el 60% de las MDSC y más del 60% de los macrófagos acumularon FMT después de 12 a 48 h (Fig. 1b, c). Solo aproximadamente el 40% de los países en desarrollo fueron FMT positivos a las 24 h. Estos datos mostraron que, al igual que los macrófagos, los MDSC pueden absorber FMT y sugirieron que FMT puede influir en la función de MDSC.

Habilidades de MDSC, macrófagos y países en desarrollo para captar FMT. un Los macrófagos se trataron con FMT (1000 ng / mL) durante 24 h, luego se tiñeron con azul de Prusia para determinar la presencia celular y la deposición de hierro entre tres grupos:antes de la separación magnética, seleccionados magnéticamente (FMT +), no aislados magnéticamente (FMT-) . b Se incubaron esplenocitos de ratones C57BL / 6 sin tratamiento previo con FMT durante 6 h, 12 h, 24 hy 48 h. Análisis FACS de los porcentajes de MDSC, macrófagos y países en desarrollo en dos subconjuntos:antes de la separación magnética, células positivas para FMT. c Relación de células positivas para FMT a células antes de la separación magnética. Todos los datos son representativos de tres experimentos independientes para cada grupo experimental y se muestran como la media ± desviación estándar

FMT inhibe la expansión de MDSC in vitro

Se ha informado que FMT induce un cambio fenotípico en los macrófagos M2 hacia un CD86 + alto , Subtipo de macrófago M1 positivo para TNF-α [3]. Dado que hay una gran cantidad de MDSC que pueden tomar FMT, planteamos la hipótesis de que FMT puede alterar la función de las MDSC. En primer lugar, se evaluaron los efectos citotóxicos de FMT a 250, 500, 1000 y 2000 μg / ml en las MDSC mediante el ensayo de viabilidad celular CCK8. Los resultados mostraron que FMT no tuvo ningún efecto sobre la viabilidad celular a dosis bajas y solo exhibió una citotoxicidad moderada a la dosis máxima de 2000 μg / mL (Fig. 2a). Luego probamos si FMT en diferentes concentraciones afectaría la generación de MDSC. Las células de la médula ósea aisladas de ratones C57BL / 6 sin tratamiento previo se trataron con medio o varias concentraciones de FMT (250, 500, 1000 y 2000 μg / ml) durante 4 días, seguido de la caracterización por citometría de flujo el día 4. GM-CSF y Se añadió IL-6 el día 0. Los resultados de tres experimentos independientes revelaron que FMT a 1000 y 2000 μg / mL disminuyó significativamente la expansión de MDSC (Fig. 2b, c).

Cuantificación por citometría de flujo del porcentaje de CD11b + Gr-1 + células después del tratamiento con FMT a 250, 500, 1000, 2000 μg / mL in vitro. un La viabilidad de las células MDSC se detectó usando ensayos CCK8 después del tratamiento con varias concentraciones de FMT durante 24 h. b , c Se cultivaron células de médula ósea aisladas de ratones C57BL / 6 durante 4 días con GM-CSF e IL-6 en presencia de diferentes concentraciones de FMT, y se evaluaron los fenotipos celulares mediante citometría de flujo. Todos los datos son representativos de tres experimentos independientes para cada grupo experimental y se muestran como la media ± desviación estándar. * p <0.05, ** p <0.01, *** p <0.001 según lo determinado por la t de un estudiante no emparejado prueba versus células tratadas con vehículo solo

FMT reduce la capacidad inmunosupresora de las MDSC

Las MDSC utilizan varios mecanismos para inhibir la proliferación y la función efectora de las células T, siendo el mejor descrito la producción de ROS y Arg-1. La expresión del componente p47phox del complejo nicotinamida adenina dinucleótido fosfato oxidasa (NOX) es responsable de la producción de ROS en las MDSC [5]. Se informó que S100A8 / A9 es sintetizado y secretado por MDSC en un circuito inflamatorio autocrino y que esto es importante en la supresión de la función de las células dendríticas en modelos de ratón [16]. Para determinar si FMT podría alterar la función de MDSC, obtuvimos MDSC derivadas de BM como se describió anteriormente y usamos RT-PCR para medir la expresión de ARNm en MDSC tratadas con FMT versus controles no tratados. Los resultados revelaron que las MDSC tratadas con FMT redujeron significativamente los niveles de expresión de Arg-1, S100A8, S100A9 y p47phox en comparación con las MDSC no tratadas (Fig. 3a-h). A continuación, evaluamos los niveles de ROS en las MDSC de control y las MDSC tratadas con FMT. Los resultados revelaron que las MDSC tratadas con FMT mostraron un nivel significativamente más bajo de ROS que las células de control (Fig. 3i, j). Posteriormente comparamos los cambios en las subpoblaciones de MDSC en los grupos tratados con FMT y sin tratar. Los resultados mostraron que FMT disminuyó el porcentaje de G-MDSC, observándose también un ligero aumento en M-MDSC (Fig. 3k, l).

FMT altera la función de las MDSC in vitro. MDSC derivadas de la médula ósea tratadas con vehículo o FMT durante 24 h. un - h Expresión génica de Arg-1, S100A8, S100A9 y p47phox de las MDSC tratadas, medida por RT-PCR cuantitativa. yo Las MDSC derivadas de BM se incubaron con FMT durante 24 horas y la FCM detectó la producción de ROS. j Datos cuantitativos de i . k Subpoblaciones de MDSC en los grupos de control y tratados con FMT. l Análisis FACS de los porcentajes de G-MDSC y M-MDSC. Todos los datos son representativos de tres experimentos independientes para cada grupo experimental y se muestran como la media ± desviación estándar. * p <0.05, ** p <0.01, *** p <0.001 según lo determinado por la t de un estudiante no emparejado prueba versus células tratadas con vehículo solo

FMT promueve la diferenciación de MDSC en macrófagos

Para determinar si FMT estimula la diferenciación final de MDSC en macrófagos, tratamos las células con 1000 μg / mL FMT el día 0 y realizamos citometría de flujo para los marcadores asociados a macrófagos CD11b y F4 / 80 en los días 1, 3 y 5. El Los resultados mostraron que 1 día después de la adición de 1000 μg / ml de FMT, la proporción de macrófagos aumentó significativamente en más de 2 veces en comparación con las células no tratadas. De manera similar, 3 días y 5 días después del tratamiento con FMT, las proporciones de macrófagos también aumentaron significativamente (Fig. 4a, b).

Efecto de FMT en la diferenciación de MDSC. un , b Las MDSC derivadas de la médula ósea se trataron con o sin 1000 μg / ml de FMT y el número de macrófagos se evaluó después de 1 día, 3 días y 5 días mediante FACS. Todos los datos son representativos de tres experimentos independientes para cada grupo experimental y se muestran como la media ± desviación estándar. * p <0,05, frente a células tratadas con vehículo solo

FMT mejora los síntomas en ratones sépticos inducidos por LPS

Se ha informado de que la sepsis se asocia con daño tisular y conduce a insuficiencia orgánica y disfunción endotelial [17]. Para investigar si el FMT reduce los síntomas tardíos de la sepsis, se evaluó la extensión del daño orgánico en los ratones experimentales después de 10 días. Un examen histopatológico de los pulmones en la sepsis inducida por LPS indicó que FMT redujo el reclutamiento de glóbulos blancos y el engrosamiento de la pared alveolar en comparación con los ratones tratados con vehículo. La tinción H&E también reveló que el área de necrosis hepática era más pequeña en los ratones tratados con FMT en comparación con los ratones tratados con vehículo (Fig. 5a, b). Además, los niveles séricos de aspartato transaminasa, usados ​​como marcador bioquímico de disfunción hepática en estos animales, fueron significativamente más bajos en los hígados de ratones tratados con FMT en comparación con el control (Fig. 5c). Sin embargo, FMT no afectó los niveles de alanina aminotransferasa (Fig. 5d). Además, se cree que la sepsis está asociada con resultados adversos como la producción elevada de citocinas inflamatorias; por lo tanto, evaluamos los cambios en los niveles de citocinas proinflamatorias en el suero. El nivel de TNF-α en el suero fue levemente, pero no significativamente, menor en los ratones tratados con FMT 3 h después de la inyección de LPS, y no se observaron diferencias en los niveles de MCP-1 o IL-1β entre los ratones tratados con FMT y el vehículo. ratones tratados (Fig. 5e-g).

FMT mejora la lesión hepática en ratones sépticos inducidos por LPS. un Los ratones recibieron PBS o un i.p. inyección de 5 mg / kg de peso corporal de LPS bacteriano el día 0. Después de 1 hy 5 días, se administró FMT a una dosis de 10 mg / kg o 100 µl de solución salina a través de la vena de la cola. Los ratones se dividieron en cuatro grupos ( n =6):control, vehículo receptor; LPS, solo recibe LPS; FMT, recibiendo FMT solamente; y LPS + FMT, recibiendo LPS y FMT. b Los tejidos de pulmón e hígado se tiñeron con hematoxilina y eosina. c-d Se midieron las transaminasas séricas (ALT y AST) ( n =6). Los niveles de citocinas (TNF-a, IL-1β y MCP-1) se midieron mediante ELISA. e - g Efectos de la sepsis inducida por LPS sobre la producción de citocinas en ratones tratados con vehículo o ferumoxitol. Niveles de citocinas medidos por ELISA en el suero de ratones tratados con vehículo o ferumoxitol siguiendo i.p. Prueba de LPS (50 mg / kg). ** p <0.01 según lo determinado por la t de un estudiante no emparejado prueba

FMT disminuye la cantidad de MDSC en el bazo de ratones sépticos inducidos por LPS

Hay cada vez más pruebas que respaldan que la inmunosupresión asociada a la sepsis aumenta la mortalidad [18], y las MDSC se consideran un componente importante de la red inmunosupresora [8]. Se ha informado que las G-MDSC se expanden más específicamente en pacientes sépticos y parecen ser los principales actores de la inmunosupresión inducida por sepsis [12]. Para determinar si FMT modula las poblaciones de MDSC en ratones de tipo salvaje, se administró FMT a ratones C57BL / 6 a través de la vena de la cola en la hora 1 y el día 5. Los resultados mostraron que no se detectaron diferencias significativas en el porcentaje de MDSC en el bazo o el hueso. médula entre el control y los ratones tratados con FMT (Fig. 6a, e). Es de destacar que FMT disminuyó la expansión dependiente de LPS de CD11b + Gr-1 + células tanto en la médula ósea como en el bazo (Fig. 6a, e), lo que concuerda con los estudios in vitro. Además, FMT también disminuyó el porcentaje de G-MDSC y M-MDSC en el bazo, mientras que sólo el porcentaje de G-MDSC disminuyó en la médula ósea (Fig. 6c, g). Estos datos indican que FMT disminuye el número de MDSC en el bazo de ratones sépticos inducidos por LPS.

FMT disminuye el número de MDSC en ratones sépticos inducidos por LPS. Los ratones se dividieron en cuatro grupos ( n =6):control, vehículo receptor; LPS, solo recibe LPS; FMT, recibiendo FMT solamente; y LPS + FMT, recibiendo LPS y FMT. un CD11b + Gr-1 + Las poblaciones de células en la médula ósea fueron detectadas por FACS. b Datos cuantitativos de a . c Gráfico de puntos de citometría de flujo de la expresión de Ly6C y Ly6G en el CD11b cerrado + células de bazos. d Cuantificación de los porcentajes de los subconjuntos de granulocitos y monocitos. e CD11b + Gr-1 + Las poblaciones de células en los bazos fueron detectadas por FCM. f Datos cuantitativos de e . g Gráfico de puntos de citometría de flujo de la expresión de Ly6C y Ly6G en las células CD11b + controladas de bazos. h Cuantificación de los porcentajes de los subconjuntos de granulocitos y monocitos. * p <0.05 según lo determinado por la t de un estudiante no emparejado prueba

FMT reduce las propiedades inmunosupresoras de células T de las MDSC in vivo

La reducción numérica de múltiples poblaciones de células inmunitarias, incluidas las células T CD4 y CD8, es una característica importante de la respuesta inmunitaria adaptativa después de la sepsis. Se asocia con un mayor riesgo de muerte, así como con otros resultados desfavorables [19, 20]. Se ha demostrado que las MDSC suprimen la proliferación de células T al alterar la expresión de la cadena zeta de las células T en pacientes con sepsis [21]. Para evaluar la proporción de linfocitos en la sepsis en etapa tardía, medimos la proporción de células T CD4 y CD8 en un modelo de sepsis murina. Los resultados mostraron que el FMT provocó un aumento en las células T CD4 y CD8 en los bazos de los ratones inducidos por LPS (Fig. 7a, b). No hubo diferencias en los porcentajes de células T CD4 y CD8 en el bazo de los ratones tratados con FMT en comparación con los ratones de control (Fig. 7a, b). Para confirmar aún más el papel de las MDSC en la supresión de la proliferación de células T in vivo, se aislaron G-MDSC y M-MDSC de los bazos de ratones expuestos a LPS tratados con vehículo o FMT mediante MACS y se cocultivaron con células T CD3 a una proporción de 1:1 proporción. Nuestros resultados mostraron que el tratamiento con FMT redujo las funciones inmunosupresoras de las células T tanto de las G-MDSC como de las M-MDSC (Fig. 7e, f). Además, también medimos los niveles de expresión de Arg-1 y p47phox en MDSC aisladas de bazos de ratones. Como se esperaba, la expresión de los genes Arg-1 y p47phox se redujo significativamente en CD11b esplénico + Gr-1 + células aisladas de ratones expuestos a LPS tratados con FMT en comparación con ratones expuestos a LPS (Fig. 7g, h). Estos datos indican que FMT disminuyó las funciones inmunosupresoras de las MDSC al disminuir la producción de Arg-1 y ROS, lo que sugiere que FMT puede reducir la inmunosupresión a largo plazo en la sepsis en etapa tardía.

FMT reduce las propiedades inmunosupresoras de las MDSC. un CD3 + CD4 + Las poblaciones de células en los bazos fueron detectadas por FACS. b Datos cuantitativos de a . c CD3 + CD8 + Las poblaciones de células en los bazos fueron detectadas por FACS. d Datos cuantitativos de a . e La capacidad de las G-MDSC de ratones para suprimir la proliferación de células T inducida por la estimulación anti-CD3 / CD28 se midió mediante FACS ( n =3 por grupo). Se muestra un histograma representativo. f La capacidad de las M-MDSC de ratones expuestos a LPS tratados con vehículo o FMT para suprimir la proliferación de células T inducida por la estimulación anti-CD3 / CD28 se midió mediante FACS ( n =3 por grupo). Se muestra un histograma representativo. g , h Expresión de ARNm de Arg-1 y p47phox en MDSC de ratones expuestos a LPS con vehículo o tratados con FMT

Discusión

El suplemento de hierro FMT aprobado por la FDA se ha utilizado ampliamente como portador de fármacos y agente de contraste en la exploración por resonancia magnética. Se encontró que FMT inhibe el crecimiento del cáncer al inducir una respuesta inmune proinflamatoria con polarización de macrófagos M1 [3], lo que indica que FMT tiene funciones inmunomoduladoras. En este estudio, evaluamos el efecto de FMT en las MDSC comparando el fenotipo y la función de las MDSC tratadas con FMT con las MDSC de control no tratadas. Estudios anteriores han demostrado que las MDSC son capaces de absorber nanopartículas magnéticas [10], y nuestros datos demostraron además que FMT atenúa las funciones inmunosupresoras de las MDSC en el bazo mediante la regulación a la baja de Arg-1 y ROS. Nuestros datos también indicaron que FMT tiene un efecto directo sobre la diferenciación de MDSC, con aproximadamente una quinta parte de las células que se diferencian uniformemente en macrófagos después de 5 días en experimentos in vitro. Aunque no investigamos el fenotipo de los macrófagos expuestos a FMT, planteamos la hipótesis de que eran del subtipo proinflamatorio M1. Los resultados demostraron claramente que FMT mejora la diferenciación y maduración de las MDSC y, por lo tanto, sugiere que esto subyace a la reducción en la población de MDSC que observamos durante la sepsis tardía.

La sepsis inicia una respuesta inmunitaria compleja que varía con el tiempo y se acompaña de respuestas proinflamatorias y antiinflamatorias. Estudios anteriores han demostrado que la muerte en las primeras etapas de la sepsis se debe a una inflamación excesiva. Derive y sus colegas informaron que la transferencia adoptiva de MDSC del día 10 a ratones sépticos atenuó la producción de citocinas peritoneales y mejoró la tasa de supervivencia [22]. Más recientemente, Namkoog et al. observed that clarithromycin pretreatment enhanced survival in a mouse model of LPS-induced shock by expanding the CD11b + Gr-1 + cell population [23]. They described that MDSCs play a protective role in sepsis, however, it should be noted that they were concerned about the early stages of sepsis. Most patients with sepsis display rapid signs of profound immunosuppression, and deaths in this phase are typically due to the acquisition of a secondary hospital-acquired infection, often with opportunistic pathogens [24]. Overzealous MDSC proliferation may facilitate a physiological syndrome of persistent immunosuppression, causing poor outcomes [25]. McClure et al. reported that they did not observe any protective effects from MDSC transfer once the mice entered the late immunosuppressive state [26]. They had previously shown that MDSCs massively expand in the bone marrow, spleen, and lymph nodes of mice with ongoing septic processes and contribute to sepsis-induced T cell suppression [11]. Additionally, Uhel reported that M-MDSCs and G-MDSCs strongly contribute to T cell dysfunction in patients with sepsis [12]. Our data demonstrated that FMT significantly decreased the percentage of MDSCs and attenuated the functions of MDSCs to restore the number of T cells present in mice during late sepsis. Therefore, when studying the role of MDSCs in sepsis, it is crucial to clearly distinguish the early and late stages of sepsis.

Mohus et al. suggested that iron deficiency was associated with increased risk of future bloodstream infections that cause sepsis, indicating that the immune defense mechanisms may be depressed compared to bacterial iron sequestration in low iron environments [27]. Controversies shown in iron supplemental studies reported that intravenous iron therapy was associated with an increased risk of infection [28]. It should be noted the iron supplements differ significantly in their physicochemical properties, which give them different biological properties [29]. With FMT, an iron core is wrapped in a carbohydrate shell, which leads to low toxicity, lysosomal uptake and degradation [30, 31]. It has been reported that FMT does not cause liver toxicity in patients or animal models and is typically metabolized within 2 months [32]. Our data showed that FMT does not increase the production of inflammatory cytokines in early sepsis, indicating that FMT can be administered in sepsis.

Conclusion

This study demonstrated a novel immune-modulatory property of FMT; however, further studies are needed to elucidate the mechanism of FMT suppression of MDSCs. Furthermore, we provide an attractive therapeutic approach for the treatment of sepsis-associated immunosuppression and targeting MDSCs may provide a promising new option for restoring the immune response during sepsis.

Disponibilidad de datos y materiales

Los conjuntos de datos utilizados y / o analizados durante el estudio actual están disponibles del autor correspondiente a solicitud razonable.

Abreviaturas

ALT:

Alanine aminotransferase

Arg1:

Arginase 1

AST:

Aspartate aminotransferase

FMT:

Ferumoxytol

G-MDSCs/PMN-MDSCs:

Polymorphonuclear MDSCs/granulocytic MDSCs

HE:

Hematoxylin–eosin

IL-1β:

Interleukin-1β

iNOS:

Inducible nitric oxide synthase

LPS:

Lipopolysaccharide

MCP 1:

Monocyte chemotactic protein 1

MDSC:

Myeloid-derived suppressor cell

MHC II:

Major histocompatibility complex

M-MDSCs:

Monocytic MDSCs

PBS:

Phosphate-buffered saline solution

ROS:

Especies reactivas de oxígeno

TLR:

Toll-like receptor

TNF-α:

Tumor necrosis factor α


Nanomateriales

  1. La función OR exclusivo:la puerta XOR
  2. Funciones C
  3. PCB miniaturizados en la intersección de forma y función
  4. Würth:apoyo individual con el primer contacto en línea
  5. Los científicos de IBM inventan un termómetro para nanoescala
  6. Los nanotubos de carbono superan el límite de la electrónica flexible
  7. Uso de ángulos para mejorar el futuro de la electrónica
  8. Detección del magnetismo del núcleo de un solo átomo
  9. Imagen de carbono oceánico en escala atómica
  10. ¿Cuál es la función de la válvula de contrapresión en el Sistema de Refrigeración?
  11. La función de los fluidos hidráulicos